Material 13-mayo-2009
1. Lamina de cristal para reacciones febriles.
2. Tubo de ensaye con tapón rojo estéril.
3. Palillos de madera.
4. Torundas de algodón alcoholizadas.
5. Centrífuga.
6. Microscopio.
7. Pipeta pasteur con lóbulo.
8. Papel secante.
9. Papel para mesa de laboratorio.
10. Torniquete.
Reactivo
1. Febrilin
“paciente”
Sangre
Hoja de solicitud de examen:
Solicitud para examen de laboratorio.
Indicaciones:
Folio de registro.
Libro.
Inmunologia.
Salmonella.
Brusella.
Proteus.
Análisis
-técnica de extracción de sangre (veno punción).
-separación del paquete sanguíneo y plasma (centrifuga).
-punteo de plasma en placa de cristal.
-mezclar plasma con reactivo de febriclin para observar la reacción de aglutinación.
-observar microscópicamente la laminilla a tras luz.
-observar microscópicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10 x 40 x.
-reportar en hoja de laboratorio.
Datos del paciente.
Tifico H: + -
Tifico O:+ -
Paratífico A: + - positivo +
Paratífico B: + - negativo -
Brusella abortus: + -
Proteus 0x19: + -
Signos y síntomas de la tifoidea.
Salmonelosis “serotipos” enfermedades tifoidea y paratifoidea.
Brusella abortus signos y síntomas (órgano al que ataca).
Proteus.
Aglutinación en sangre:
Palillos de madera.
Vasal.
Nintrube.
Frasco con tapón morado.
Centrifuga.
Micro centrifuga.
Papel secante.
Gradilla.
Torundas de algodón con alcohol.
Placa de porcelana escavada.
Pipeta pasteur.
Papel para mesa.
Reactivos:
Reactivos tificadores A B D
Tipo sanguíneo.
Gradilla.
Pipeta.
Barrido write.
sábado, 16 de mayo de 2009
elaborar medio de cultivo
Preanalitica-analítica 12-mayo-2009
Elaborar medio de cultivo
Técnica autoclave
-agar ss.
-lía.
-mio.
-of.
-mac conkay.
-agar chocolate.
-d. saborau.
-frotis tinturas.
Pie de rey de microogGA
Observación microscópica
Tinción de Gram: alcohol, cetona, cristal, yodo lugol.
Enfoque 100x
Enterobacterias
• Paramecium.
• Escherichia coli.
• Salmonella.
• Proteus.
• Brusella abortus.
Prueba de aglutinamiento
Pos-analítica
H O A B brusella abortus
Proteus 0x19
10 – 40x
Practica 1
Operar Equipo de Laboratorio así como Elaborar Medios de Cultivo.
Etapa preanalitica:
Practica 1: Elaborar medio de cultivo.
Practica 2: Esterilización de medios de cultivo.
Practica 3: Siembras en estría de medios de cultivo.
Practica 4: Observación del desarrollo de microorganismos en medios de cultivo, lectura de colonias.
Practica 5: Elaborar frotis para tinción.
Practica 6: Tinción de Gram.
Practica 7: Observación microscópica en objetivo 100x con aceite de inmersión.
Practica 8: Practica prueba de reacciones febriles para prueba de aglutinación en serologia. (Tubo sin anticoagulante tapón rojo).
Practica 9: Prueba de aglutinación en sangre fresca utilizando tubo con anticoagulante. (Tubo con tapón morado).
Elaborar medio de cultivo
Técnica autoclave
-agar ss.
-lía.
-mio.
-of.
-mac conkay.
-agar chocolate.
-d. saborau.
-frotis tinturas.
Pie de rey de microogGA
Observación microscópica
Tinción de Gram: alcohol, cetona, cristal, yodo lugol.
Enfoque 100x
Enterobacterias
• Paramecium.
• Escherichia coli.
• Salmonella.
• Proteus.
• Brusella abortus.
Prueba de aglutinamiento
Pos-analítica
H O A B brusella abortus
Proteus 0x19
10 – 40x
Practica 1
Operar Equipo de Laboratorio así como Elaborar Medios de Cultivo.
Etapa preanalitica:
Practica 1: Elaborar medio de cultivo.
Practica 2: Esterilización de medios de cultivo.
Practica 3: Siembras en estría de medios de cultivo.
Practica 4: Observación del desarrollo de microorganismos en medios de cultivo, lectura de colonias.
Practica 5: Elaborar frotis para tinción.
Practica 6: Tinción de Gram.
Practica 7: Observación microscópica en objetivo 100x con aceite de inmersión.
Practica 8: Practica prueba de reacciones febriles para prueba de aglutinación en serologia. (Tubo sin anticoagulante tapón rojo).
Practica 9: Prueba de aglutinación en sangre fresca utilizando tubo con anticoagulante. (Tubo con tapón morado).
tarea 3
Tinción
Tinción: El microscopio de campo claro es mas útil para la observación de especimenes teñidos.
Los colorantes son compuestos químicos utilizados para aumentar el contraste existen algunos, llamados colorantes vitales que pueden añadirse directamente a una preparación en frasco; por tanto, colorean células vivas.
Tinción directa
Tinción indirecta: Este método la presencia de un anticuerpo no fluorescente sobre la superficie de la célula se detecta mediante un anticuerpo fluorescente dirigido contra el anticuerpo no fluorescente.
Esto se consigue inmunizando un conejo con bacterias, el que producirá globulinas específicas. Luego se utilizan Igloo anti-conejo marcadas con un colorante fluorescente.
La ventaja de este método es que no se requiere un anticuerpo marcado para cada antigeno (bacteria) a determinar.
Tinción por azul de metileno o cristal violeta: Se denominan bacterias Gram positivas a aquellas que retienen la tinción azul y bacterias Gram negativas a las que quedan decoloradas. Algunas bacterias presentan capacidad variable de tinción de Gram y se llaman Gram variables. Bacterias Gram positivas típicas son los estafilococos que producen forúnculos; Gram negativas representativas son la Escherichia coli de la flora intestinal o los bacilos de la tos ferina; Gram variables son los bacilos de Koch de la tuberculosis.
Tinción de Gram: La tinción de Gram se utiliza para identificar bacterias tratándolas con un tinte azul y observando cómo responden a esta coloración. La forma en que se colorean los distintos tipos de células depende de las variaciones de estructura de la pared celular. Las bacterias Gram positivas, retienen el tinte y se colorean de azul. Es un procedimiento utilizado universalmente. En un primer momento las bacterias se tiñen con violeta de genciana y después se tratan con la solución de Gram; por último se lavan con alcohol etílico, y unas bacterias retienen el fuerte color azul de la violeta de genciana y otras se decoloran por completo. A veces se añade una contratinción con fucsina o eosina para teñir las bacterias decoloradas de color rojo y hacerlas más visibles.
Tinción Ziehl-Neelsen: Esta tinción sirve para teñir bacterias del genero mycobacterium, el resto de las bacterias se tiñen de azul por el colorante de contraste.
Bibliografía: Introducción a la microbiología.
-John L. Ingraham.
-Catherine A. Ingraham.
Págs. 55 y 57.
Tinción: El microscopio de campo claro es mas útil para la observación de especimenes teñidos.
Los colorantes son compuestos químicos utilizados para aumentar el contraste existen algunos, llamados colorantes vitales que pueden añadirse directamente a una preparación en frasco; por tanto, colorean células vivas.
Tinción directa
Tinción indirecta: Este método la presencia de un anticuerpo no fluorescente sobre la superficie de la célula se detecta mediante un anticuerpo fluorescente dirigido contra el anticuerpo no fluorescente.
Esto se consigue inmunizando un conejo con bacterias, el que producirá globulinas específicas. Luego se utilizan Igloo anti-conejo marcadas con un colorante fluorescente.
La ventaja de este método es que no se requiere un anticuerpo marcado para cada antigeno (bacteria) a determinar.
Tinción por azul de metileno o cristal violeta: Se denominan bacterias Gram positivas a aquellas que retienen la tinción azul y bacterias Gram negativas a las que quedan decoloradas. Algunas bacterias presentan capacidad variable de tinción de Gram y se llaman Gram variables. Bacterias Gram positivas típicas son los estafilococos que producen forúnculos; Gram negativas representativas son la Escherichia coli de la flora intestinal o los bacilos de la tos ferina; Gram variables son los bacilos de Koch de la tuberculosis.
Tinción de Gram: La tinción de Gram se utiliza para identificar bacterias tratándolas con un tinte azul y observando cómo responden a esta coloración. La forma en que se colorean los distintos tipos de células depende de las variaciones de estructura de la pared celular. Las bacterias Gram positivas, retienen el tinte y se colorean de azul. Es un procedimiento utilizado universalmente. En un primer momento las bacterias se tiñen con violeta de genciana y después se tratan con la solución de Gram; por último se lavan con alcohol etílico, y unas bacterias retienen el fuerte color azul de la violeta de genciana y otras se decoloran por completo. A veces se añade una contratinción con fucsina o eosina para teñir las bacterias decoloradas de color rojo y hacerlas más visibles.
Tinción Ziehl-Neelsen: Esta tinción sirve para teñir bacterias del genero mycobacterium, el resto de las bacterias se tiñen de azul por el colorante de contraste.
Bibliografía: Introducción a la microbiología.
-John L. Ingraham.
-Catherine A. Ingraham.
Págs. 55 y 57.
miércoles, 13 de mayo de 2009
tarea 2
Tarea 2
Medio de cultivo.
Un método fundamental para estudiar las bacterias es cultivarlas en un medio líquido o en la superficie de un medio sólido de agar. Los medios de cultivo contienen distintos nutrientes que van, desde azúcares simples hasta sustancias complejas como la sangre o el extracto de caldo de carne. Para aislar o purificar una especie bacteriana a partir de una muestra formada por muchos tipos de bacterias, se siembra en un medio de cultivo sólido donde las células que se multiplican no cambian de localización; tras muchos ciclos reproductivos, cada bacteria individual genera por escisión binaria una colonia macroscópica compuesta por decenas de millones de células similares a la original. Si esta colonia individual se siembra a su vez en un nuevo medio crecerá como cultivo puro de un solo tipo de bacteria.
Clasificación de medio de cultivo.
Según su aspecto físico:
• fosiferoliquidos
• Semi-sólidos
• Sólidos duros o muy duros
Según su uso:
• Selectivos
• Selectivos de enriquecimiento
• Diferenciales
• Para cultivar gérmenes anaerobios
• Para medir potencia de antibióticos
• De transporte en micro
• Para filtración a través de membrana
• Para cultivo de hongos y levaduras
• Para cultivo de protozoarios
Tipos de siembras en medios de cultivo.
El paso de una muestra microbiana a un medio de cultivo se denomina siembra o inoculación
El paso de una muestra de un medio a otro se denomina resiembra.
a) Siembra del inóculo en medio líquido:
O Con asa de siembra se adiciona al medio agitándola.
O Con pipeta se vierte agitándose hasta su homogeneización.
O Con hisopo o escobillón igual que con el asa de siembra.
b) Siembra de inóculo en medio sólido
a. Siembra de inóculo en placa
* Técnica de Barry: Para ello en el medio de cultiva previamente fundido en tubo se le añade el inóculo, se homogeiniza, se vierte en la placa Petri y se deja solidificar. Se utiliza para la determinación de CMI
* Siembra de muestra líquida en placa con asa de Digralsky: Consiste en distribuir la muestra de manera uniforme por la superficie del medio de cultivo contenido en la placa. Para ello adicionamos al medio sólido un inóculo líquido con la pipeta graduada, y posteriormente se extiende con el asa de Digralsky. Se utiliza para el recuento de viables y antibiogramas.
*Siembra por agotamiento o aislamiento en estría: Se tomará con el asa de siembra una cantidad adecuada depositando el inóculo en uno de los extremos superiores de la placa, se realizarán movimientos en zig-zag sin levantar el asa hasta concluir la siembra en toda la placa.
*Siembra por agotamiento: Aislamiento en estría múltiple. Se toma el inóculo y se deposita en el extremo superior, extendiéndose en la parte superior solamente. Flameamos y giramos ligeramente la placa continuando con el proceso anterior. Repetimos la operación 4 o 5 veces. El resultado son colonias cada vez más separadas como consecuencia de que cada vez se van arrastrando y separando más la muestra.
* Técnica de los cuatro cuadrantes: Con un rotulador dividimos la placa en 4 cuadrantes iguales. Con el asa extendemos por cada cuadrante el inóculo haciendo zig-zag sin flamear. Finalmente observaremos como en el último cuadrante las colonias se encuentran aisladas o separadas.
* Técnica de los 3 giros: Se rotula la placa de forma análoga con el asa de platino y se siembra por estría la mitad superior de la placa. Sin flamear giramos 90º y volvemos a sembrar (así hasta 3 veces). Esta técnica no es muy utilizada.
* Técnica de siembra por dilución: Se dispondrá de una batería de tubos y se adicionará una cantidad de muestra conocida en el primer tuvo, homogeneizamos diluimos en los siguientes tubos hasta obtener la dilución deseada. Una vez realizada la dilución (ej. 10-3 y 10-4) inoculamos en placas de cultivo y extendemos con el asa de Digralsky. Incubamos a la temperatura precisa durante 24 horas y recontamos.
b. Siembra del inóculo en tubo
* Siembra por estría en tubos con medio sólido inclinado: Con el asa de siembra se añade al tubo una cantidad de muestra realizando movimientos ascendentes en zig-zag. Este método es utilizado para conservar cepas durante largos periodos, así como para la realización de ciertas pruebas bioquímicas.
* Siembra por picadura: Con hilo de siembra introducir el asa en el medio de cultivo hasta el fondo en la zona central de este. Se utiliza en la siembra de cultivos semisólidos.
El paso de una muestra microbiana a un medio de cultivo se denomina siembra o inoculación
El paso de una muestra de un medio a otro se denomina resiembra.
a) Siembra del inóculo en medio líquido:
o Con asa de siembra se adiciona al medio agitándola.
o Con pipeta se vierte agitándose hasta su homogeneización.
o Con hisopo o escobillón igual que con el asa de siembra.
b) Siembra de inóculo en medio sólido
a. Siembra de inóculo
* Técnica de Barry: Para ello en el medio de cultiva previamente fundido en tubo se le añade el inóculo, se homogeiniza, se vierte en la placa Petri y se deja solidificar. Se utiliza para la determinación de CMI
* Siembra de muestra líquida en placa con asa de Digralsky: Consiste en distribuir la muestra de manera uniforme por la superficie del medio de cultivo contenido en la placa. Para ello adicionamos al medio sólido un inóculo líquido con la pipeta graduada, y posteriormente se extiende con el asa de Digralsky. Se utiliza para el recuento de viables y antibiogramas.
*Siembra por agotamiento o aislamiento en estría: Se tomará con el asa de siembra una cantidad adecuada depositando el inóculo en uno de los extremos superiores de la placa, se realizarán movimientos en zig-zag sin levantar el asa hasta concluir la siembra en toda la placa.
*Siembra por agotamiento: Aislamiento en estría múltiple. Se toma el inóculo y se deposita en el extremo superior, extendiéndose en la parte superior solamente. Flameamos y giramos ligeramente la placa continuando con el proceso anterior. Repetimos la operación 4 o 5 veces. El resultado son colonias cada vez más separadas como consecuencia de que cada vez se van arrastrando y separando más la muestra.
* Técnica de los cuatro cuadrantes: Con un rotulador dividimos la placa en 4 cuadrantes iguales. Con el asa extendemos por cada cuadrante el inóculo haciendo zig-zag sin flamear. Finalmente observaremos como en el último cuadrante las colonias se encuentran aisladas o separadas.
* Técnica de los 3 giros: Se rotula la placa de forma análoga con el asa de platino y se siembra por estría la mitad superior de la placa. Sin flamear giramos 90º y volvemos a sembrar (así hasta 3 veces). Esta técnica no es muy utilizada.
* Técnica de siembra por dilución: Se dispondrá de una batería de tubos y se adicionará una cantidad de muestra conocida en el primer tuvo, homogeneizamos diluimos en los siguientes tubos hasta obtener la dilución deseada. Una vez realizada la dilución (ej. 10-3 y 10-4) inoculamos en placas de cultivo y extendemos con el asa de Digralsky. Incubamos a la temperatura precisa durante 24 horas y recontamos.
b. Siembra del inóculo en tubo
* Siembra por estría en tubos con medio sólido inclinado: Con el asa de siembra se añade al tubo una cantidad de muestra realizando movimientos ascendentes en zig-zag. Este método es utilizado para conservar cepas durante largos periodos, así como para la realización de ciertas pruebas bioquímicas.
* Siembra por picadura: Con hilo de siembra introducir el asa en el medio de cultivo hasta el fondo en la zona central de este. Se utiliza en la siembra de cultivos semisólidos.
Medio de cultivo.
Un método fundamental para estudiar las bacterias es cultivarlas en un medio líquido o en la superficie de un medio sólido de agar. Los medios de cultivo contienen distintos nutrientes que van, desde azúcares simples hasta sustancias complejas como la sangre o el extracto de caldo de carne. Para aislar o purificar una especie bacteriana a partir de una muestra formada por muchos tipos de bacterias, se siembra en un medio de cultivo sólido donde las células que se multiplican no cambian de localización; tras muchos ciclos reproductivos, cada bacteria individual genera por escisión binaria una colonia macroscópica compuesta por decenas de millones de células similares a la original. Si esta colonia individual se siembra a su vez en un nuevo medio crecerá como cultivo puro de un solo tipo de bacteria.
Clasificación de medio de cultivo.
Según su aspecto físico:
• fosiferoliquidos
• Semi-sólidos
• Sólidos duros o muy duros
Según su uso:
• Selectivos
• Selectivos de enriquecimiento
• Diferenciales
• Para cultivar gérmenes anaerobios
• Para medir potencia de antibióticos
• De transporte en micro
• Para filtración a través de membrana
• Para cultivo de hongos y levaduras
• Para cultivo de protozoarios
Tipos de siembras en medios de cultivo.
El paso de una muestra microbiana a un medio de cultivo se denomina siembra o inoculación
El paso de una muestra de un medio a otro se denomina resiembra.
a) Siembra del inóculo en medio líquido:
O Con asa de siembra se adiciona al medio agitándola.
O Con pipeta se vierte agitándose hasta su homogeneización.
O Con hisopo o escobillón igual que con el asa de siembra.
b) Siembra de inóculo en medio sólido
a. Siembra de inóculo en placa
* Técnica de Barry: Para ello en el medio de cultiva previamente fundido en tubo se le añade el inóculo, se homogeiniza, se vierte en la placa Petri y se deja solidificar. Se utiliza para la determinación de CMI
* Siembra de muestra líquida en placa con asa de Digralsky: Consiste en distribuir la muestra de manera uniforme por la superficie del medio de cultivo contenido en la placa. Para ello adicionamos al medio sólido un inóculo líquido con la pipeta graduada, y posteriormente se extiende con el asa de Digralsky. Se utiliza para el recuento de viables y antibiogramas.
*Siembra por agotamiento o aislamiento en estría: Se tomará con el asa de siembra una cantidad adecuada depositando el inóculo en uno de los extremos superiores de la placa, se realizarán movimientos en zig-zag sin levantar el asa hasta concluir la siembra en toda la placa.
*Siembra por agotamiento: Aislamiento en estría múltiple. Se toma el inóculo y se deposita en el extremo superior, extendiéndose en la parte superior solamente. Flameamos y giramos ligeramente la placa continuando con el proceso anterior. Repetimos la operación 4 o 5 veces. El resultado son colonias cada vez más separadas como consecuencia de que cada vez se van arrastrando y separando más la muestra.
* Técnica de los cuatro cuadrantes: Con un rotulador dividimos la placa en 4 cuadrantes iguales. Con el asa extendemos por cada cuadrante el inóculo haciendo zig-zag sin flamear. Finalmente observaremos como en el último cuadrante las colonias se encuentran aisladas o separadas.
* Técnica de los 3 giros: Se rotula la placa de forma análoga con el asa de platino y se siembra por estría la mitad superior de la placa. Sin flamear giramos 90º y volvemos a sembrar (así hasta 3 veces). Esta técnica no es muy utilizada.
* Técnica de siembra por dilución: Se dispondrá de una batería de tubos y se adicionará una cantidad de muestra conocida en el primer tuvo, homogeneizamos diluimos en los siguientes tubos hasta obtener la dilución deseada. Una vez realizada la dilución (ej. 10-3 y 10-4) inoculamos en placas de cultivo y extendemos con el asa de Digralsky. Incubamos a la temperatura precisa durante 24 horas y recontamos.
b. Siembra del inóculo en tubo
* Siembra por estría en tubos con medio sólido inclinado: Con el asa de siembra se añade al tubo una cantidad de muestra realizando movimientos ascendentes en zig-zag. Este método es utilizado para conservar cepas durante largos periodos, así como para la realización de ciertas pruebas bioquímicas.
* Siembra por picadura: Con hilo de siembra introducir el asa en el medio de cultivo hasta el fondo en la zona central de este. Se utiliza en la siembra de cultivos semisólidos.
El paso de una muestra microbiana a un medio de cultivo se denomina siembra o inoculación
El paso de una muestra de un medio a otro se denomina resiembra.
a) Siembra del inóculo en medio líquido:
o Con asa de siembra se adiciona al medio agitándola.
o Con pipeta se vierte agitándose hasta su homogeneización.
o Con hisopo o escobillón igual que con el asa de siembra.
b) Siembra de inóculo en medio sólido
a. Siembra de inóculo
* Técnica de Barry: Para ello en el medio de cultiva previamente fundido en tubo se le añade el inóculo, se homogeiniza, se vierte en la placa Petri y se deja solidificar. Se utiliza para la determinación de CMI
* Siembra de muestra líquida en placa con asa de Digralsky: Consiste en distribuir la muestra de manera uniforme por la superficie del medio de cultivo contenido en la placa. Para ello adicionamos al medio sólido un inóculo líquido con la pipeta graduada, y posteriormente se extiende con el asa de Digralsky. Se utiliza para el recuento de viables y antibiogramas.
*Siembra por agotamiento o aislamiento en estría: Se tomará con el asa de siembra una cantidad adecuada depositando el inóculo en uno de los extremos superiores de la placa, se realizarán movimientos en zig-zag sin levantar el asa hasta concluir la siembra en toda la placa.
*Siembra por agotamiento: Aislamiento en estría múltiple. Se toma el inóculo y se deposita en el extremo superior, extendiéndose en la parte superior solamente. Flameamos y giramos ligeramente la placa continuando con el proceso anterior. Repetimos la operación 4 o 5 veces. El resultado son colonias cada vez más separadas como consecuencia de que cada vez se van arrastrando y separando más la muestra.
* Técnica de los cuatro cuadrantes: Con un rotulador dividimos la placa en 4 cuadrantes iguales. Con el asa extendemos por cada cuadrante el inóculo haciendo zig-zag sin flamear. Finalmente observaremos como en el último cuadrante las colonias se encuentran aisladas o separadas.
* Técnica de los 3 giros: Se rotula la placa de forma análoga con el asa de platino y se siembra por estría la mitad superior de la placa. Sin flamear giramos 90º y volvemos a sembrar (así hasta 3 veces). Esta técnica no es muy utilizada.
* Técnica de siembra por dilución: Se dispondrá de una batería de tubos y se adicionará una cantidad de muestra conocida en el primer tuvo, homogeneizamos diluimos en los siguientes tubos hasta obtener la dilución deseada. Una vez realizada la dilución (ej. 10-3 y 10-4) inoculamos en placas de cultivo y extendemos con el asa de Digralsky. Incubamos a la temperatura precisa durante 24 horas y recontamos.
b. Siembra del inóculo en tubo
* Siembra por estría en tubos con medio sólido inclinado: Con el asa de siembra se añade al tubo una cantidad de muestra realizando movimientos ascendentes en zig-zag. Este método es utilizado para conservar cepas durante largos periodos, así como para la realización de ciertas pruebas bioquímicas.
* Siembra por picadura: Con hilo de siembra introducir el asa en el medio de cultivo hasta el fondo en la zona central de este. Se utiliza en la siembra de cultivos semisólidos.
3er parcial
Tarea 1 Las características del microorganismo determinado paramecio que pertenece al grupo de los protosarios.
Son organismos unicelulares que se mueven gracias a unos pequeños pelos llamados cilios. Los cilios también sirven para crear corrientes en el agua que ayudan a arrastrar pequeñas partículas de alimento. El paramecio es un protozoo que tiene forma de zapatilla. Abunda en las charcas de agua dulce de todo el mundo. Está cubierto de cilios que le sirven para moverse y para producir corrientes de agua, que utiliza para alimentarse y respirar. Se mueven en el agua formando una espiral y a la vez dan vueltas sobre sí mismos. El paramecio tiene dos núcleos. Uno grande, sin el cual no puede vivir, y uno o dos pequeños, sin los cuales no puede reproducirse. Por lo general, se reproduce dividiéndose en dos. Investigar las características de los siguientes microorganismos pertenecientes al grupo de las enterobacterias.
Escherichia coli: Bacteria con forma de bastón (bacilo), que pertenece a la familia de las Enterobacteriáceas; está considerada como el material biológico más utilizado en experimentación. Esta bacteria se encuentra en el tracto intestinal de los mamíferos. Las especies de Escherichia coli oportunistas producen infecciones sólo si abandonan el colon. La Escherichia coli es un organismo adecuado para la investigación por su crecimiento rápido y porque su cultivo es sencillo. Ha facilitado descubrimientos muy importantes sobre metabolismo, reproducción celular e ingeniería genética.
Salmonella typhi: Las salmonelas son bacterias Gram negativas, no esporuladas y móviles, que pertenecen a la familia Enterobacteriáceas. S. typhi, afecta a los seres humanos y produce la fiebre tifoidea, la mayoría son patógenas tanto para el hombre como para los animales. En los seres humanos las salmonelas son responsables de diferentes cuadros clínicos como la fiebre tifoidea y paratifoidea, la gastroenteritis por Salmonella (salmonelosis), y las bacteriemias e infecciones localizadas.Las salmonelas se transmiten sobre todo a través de alimentos contaminados.
Proteus: Proteus es un género de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de hacerlo. Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles. Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol.
Brusella abortus: Son bacilos cortos o cocobasilos gramnegativos que se colorean mal con la coloración convencional de gram, pequeños inmóviles y aerobios.
Bibliografía: Diagnostico microbiológico. Forbes. Sahm. Weissfedl. Pág. 313, 507
Son organismos unicelulares que se mueven gracias a unos pequeños pelos llamados cilios. Los cilios también sirven para crear corrientes en el agua que ayudan a arrastrar pequeñas partículas de alimento. El paramecio es un protozoo que tiene forma de zapatilla. Abunda en las charcas de agua dulce de todo el mundo. Está cubierto de cilios que le sirven para moverse y para producir corrientes de agua, que utiliza para alimentarse y respirar. Se mueven en el agua formando una espiral y a la vez dan vueltas sobre sí mismos. El paramecio tiene dos núcleos. Uno grande, sin el cual no puede vivir, y uno o dos pequeños, sin los cuales no puede reproducirse. Por lo general, se reproduce dividiéndose en dos. Investigar las características de los siguientes microorganismos pertenecientes al grupo de las enterobacterias.
Escherichia coli: Bacteria con forma de bastón (bacilo), que pertenece a la familia de las Enterobacteriáceas; está considerada como el material biológico más utilizado en experimentación. Esta bacteria se encuentra en el tracto intestinal de los mamíferos. Las especies de Escherichia coli oportunistas producen infecciones sólo si abandonan el colon. La Escherichia coli es un organismo adecuado para la investigación por su crecimiento rápido y porque su cultivo es sencillo. Ha facilitado descubrimientos muy importantes sobre metabolismo, reproducción celular e ingeniería genética.
Salmonella typhi: Las salmonelas son bacterias Gram negativas, no esporuladas y móviles, que pertenecen a la familia Enterobacteriáceas. S. typhi, afecta a los seres humanos y produce la fiebre tifoidea, la mayoría son patógenas tanto para el hombre como para los animales. En los seres humanos las salmonelas son responsables de diferentes cuadros clínicos como la fiebre tifoidea y paratifoidea, la gastroenteritis por Salmonella (salmonelosis), y las bacteriemias e infecciones localizadas.Las salmonelas se transmiten sobre todo a través de alimentos contaminados.
Proteus: Proteus es un género de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de hacerlo. Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles. Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol.
Brusella abortus: Son bacilos cortos o cocobasilos gramnegativos que se colorean mal con la coloración convencional de gram, pequeños inmóviles y aerobios.
Bibliografía: Diagnostico microbiológico. Forbes. Sahm. Weissfedl. Pág. 313, 507
viernes, 8 de mayo de 2009
examen 2do parcial
Segundo Examen parcial de la materia de Operar Equipo de Laboratorio.
1.-Necesario para la respiración celular; presente en casi todos los compuestos orgánicos; forma parte del agua: Oxigeno.
2.- Constituye el esqueleto de las moléculas orgánicas; puede formar cuatro enlaces con otros tantos átomos: Carbono.
3.- El hidrogeno forma el agua. Funciona como Ion para formar tampones que regulan la acidez y basicidad del cuerpo reaccionando con el co2 de nuestros pulmones para formar bicarbonato de sodio: Oxigeno.
4.- Componente estructural de los huesos y dientes; importante en la contracción muscular, conducción de impulsos nerviosos y coagulación de la sangre: Calcio.
5.- Componente de todas las proteínas y ácidos nucleicos y de algunos lípidos: Nitrógeno.
6.- Los serotipo que presenta un cuadro de paratifoidea se representan con las letras: c. HA.
7.- La lámina de cristal excavada, se utiliza para pruebas de tipo: Inmunologia.
8.- La cámara de Neubauer, es utilizada en el área de: Hematologia.
9.- Que nombre recibe la pipeta que puede medir 0.5 ml. y se pipetea con manguera: Thomas.
10.- Que nombre recibe el espejo de agua que sube en las pipetas y marca la graduación de las mismas: Menisco.
11.- Que nombre reciben los reactivos que se utilizan en la prueba de Reacciones Febriles: Tipificadotes AB.
12.- Que tipo de objetivo se utiliza para identificar con aceite de inmersión: 10 x.
1.-Necesario para la respiración celular; presente en casi todos los compuestos orgánicos; forma parte del agua: Oxigeno.
2.- Constituye el esqueleto de las moléculas orgánicas; puede formar cuatro enlaces con otros tantos átomos: Carbono.
3.- El hidrogeno forma el agua. Funciona como Ion para formar tampones que regulan la acidez y basicidad del cuerpo reaccionando con el co2 de nuestros pulmones para formar bicarbonato de sodio: Oxigeno.
4.- Componente estructural de los huesos y dientes; importante en la contracción muscular, conducción de impulsos nerviosos y coagulación de la sangre: Calcio.
5.- Componente de todas las proteínas y ácidos nucleicos y de algunos lípidos: Nitrógeno.
6.- Los serotipo que presenta un cuadro de paratifoidea se representan con las letras: c. HA.
7.- La lámina de cristal excavada, se utiliza para pruebas de tipo: Inmunologia.
8.- La cámara de Neubauer, es utilizada en el área de: Hematologia.
9.- Que nombre recibe la pipeta que puede medir 0.5 ml. y se pipetea con manguera: Thomas.
10.- Que nombre recibe el espejo de agua que sube en las pipetas y marca la graduación de las mismas: Menisco.
11.- Que nombre reciben los reactivos que se utilizan en la prueba de Reacciones Febriles: Tipificadotes AB.
12.- Que tipo de objetivo se utiliza para identificar con aceite de inmersión: 10 x.
cuestionario del vernier
Cuestionario: 1 Segunda unidad.
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama: Pedro Núñez
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
3.- También se ha llamado pie de rey al: Vernier
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra pedro Vernier.
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey? Pie de rey al vernier
:::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::
En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición
1 Mordazas para medidas externas.
2 Mordazas para medidas internas.
3 Coliza para medida de profundidades.
4 Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
5 Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
6 Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
7 Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
8 Botón de deslizamiento y freno.
Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción.
Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama: Pedro Núñez
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
3.- También se ha llamado pie de rey al: Vernier
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra pedro Vernier.
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey? Pie de rey al vernier
:::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::
En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición
1 Mordazas para medidas externas.
2 Mordazas para medidas internas.
3 Coliza para medida de profundidades.
4 Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
5 Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
6 Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
7 Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
8 Botón de deslizamiento y freno.
Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción.
Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.
camara de neubauer
Sangre
Recuento de eritrocitos
Recuento de eritrocitos: ejemplo
Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )
Como
+.se hace?
La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente...
Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha...
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:
Mujeres: 3.9-5.6 millones/µl
Hombres: 4.5-6.5 millones/µl
Determine el recuento del sujeto cuya muestra aparece en la imagen.
Cual es la solución?
Técnicas de estudio de líneas celulares
TÉCNICAS DE CONTAJE CELULAR
Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. Controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.
Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. La cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos líneas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :
concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.
Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.
Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidio
En la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células.
Se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuenta glóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.
7. El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.
Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):
Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):
Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n.
Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:
Siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida.
Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).
Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de volumen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial preciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. En ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)
Recuento de eritrocitos
Recuento de eritrocitos: ejemplo
Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )
Como
+.se hace?
La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente...
Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha...
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:
Mujeres: 3.9-5.6 millones/µl
Hombres: 4.5-6.5 millones/µl
Determine el recuento del sujeto cuya muestra aparece en la imagen.
Cual es la solución?
Técnicas de estudio de líneas celulares
TÉCNICAS DE CONTAJE CELULAR
Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. Controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.
Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. La cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos líneas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :
concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.
Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.
Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidio
En la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células.
Se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuenta glóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.
7. El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.
Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):
Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):
Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n.
Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:
Siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida.
Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).
Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de volumen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial preciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. En ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)
practica pesos y medidas en equipo
Centro de Bachillerato Tecnológico
industrial y de servicios no. 155
Mesa 3
Med. Víctor Manuel Alfaro López
Operar equipo y materiales de laboratorio
Practica
Pesos y medidas
31-marzo-2009
Hoja de datos personales:
2LM
Med. Víctor Manuel Alfaro López
Operar Equipo y Material de Laboratorio
• Borjas young Miriam Alejandra.
• Cárdenas Osuna Eric Alonso.
• Godinez Ayala Liliana.
• Herrera Hernández Ana Karen.
• Hidalgo Reyes Yahaira Anette.
• Huitron Barajas José Alberto.
• Jáuregui Flores Erick Fernando.
• Olmos Sahagun Genaro.
• Parra Hernández Ilan Alonso.
Objetivo:
“Laboratorio de Análisis Clínicos”
Practica: Uso y Manejo de la Balanza Granataria.
El alumno técnico en laboratorio clínico deberá aprender a usar la balanza granataria para saber los pesos, volúmenes y medidas exactas de las sustancias y algunos materiales de laboratorio, aplicando los conocimientos que se le han brindado y sus propios conocimientos para poder utilizar este material en cualquier área del laboratorio clínico. Teniendo como finalidad capacitarnos en lo más básico.
Para que todo esto sea posible el alumno debe llagar puntualmente y con su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes, cubre boca).
Para evitar la contaminación de las sustancias o líquidos que se manejan. Los integrantes de la mesa tendrán que manejar y revisar cuidadosamente cada instrumento para evitar caídas y revisar que no estén dañados para que al momento de utilizarlos no ocurra ningún accidente.
Justificación:
Este tema nos ayuda para saber usar la balanza granataria y poderla usar en las practicas que realizaremos de hoy en adelante practicas como: medio de cultivo, determinar el volumen o peso de alguna sustancia, liquida o en polvo.
El objetivo de esta práctica fue aprender a pesar y medir los materiales utilizados en el laboratorio clínico y a desarrollar las habilidades del alumno, lo cual aprenderán.
Utilizar la balanza granataria, saber el peso exacto de cada material es otro aspecto fundamental ya desarrollado.
Con esta práctica aprendimos a manejar la balanza granataria adecuadamente ya que es una herramienta muy utilizada. Además al mismo tiempo pudimos manejar instrumentos de cristalería y es muy útil para poder manejarlos y conocerlos mejor.
Introducción:
Los alumnos de laboratorio clínico, deben utilizar lo balanza granataria de forma adecuada utilizando los conocimientos anteriormente conocidos, para que puedan obtener mejor funcionamiento y manejo de la misma ya que podrán pesar con exactitud cualquier sustancia o material que desee o necesite.
Para ello cada integrante tendrá que aprender individualmente con la ayuda del maestro y compañeros de mesa a mover este instrumento para que a la hora de un examen tenga el conocimiento adecuado de este instrumento.
Dentro del procedimiento se llevara acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería así como las sustancias, solventes y otro tipo de reactivos que se soliciten, todo esto con la finalidad de que el alumno experimente y se familiarice con los materiales y el procedimiento de esta practica.
Indice:
Portada.
Contra portada.
Hoja de datos personales.
Objetivo.
Justificación.
Objetivo particular.
Introducción.
Marco teórico.
Desarrollo.
Fichas bibliografías.
Conclusión.
Marco Teórico:
El día martes 30 de marzo del 2009 en la clase del profesor Víctor realizamos nuestra práctica de pesos y medidas con nuestro equipo de bioseguridad puesto; En esta práctica medimos algunos materiales de los cuales obtuvimos los siguientes resultados.
Material:
Caja de petri: 87.9 gr.
Medio de cultivo: 450 gr.
Vidrio de reloj: 25 gr.
Probeta graduada 100 ml: 98.4 gr.
Pipeta de Salí: 4.8 gr.
Pipeta de 5 ml: 22.9 gr.
Vidrio escavado: 31.1 gr.
Vaso de precipitado de 500 ml: 117.2 gr.
Vaso de precipitado de 50 ml: 27.6 gr.
Pipeta pasteur: 3.7 gr.
Espátula: 51.6 gr.
Tubo de ensaye: 9 gr.
Manguerilla con boquilla: 3.5 gr.
Cristalizador: 47.9 gr.
Cristalizador con sal: 79.1 gr.
Sal: 31.1 gr.
Pipeta de 100 ml: 3.3 gr.
Vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr.
Vidrio de reloj con 1 ml de agua: 25.2 gr.
Desarrollo:
Unidad II
Pesos y Medidas
El alumno debe llagar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos químicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubre boca).
Instrucciones al desarrollar dentro del laboratorio clínico:
Materiales que se ocuparan en esta práctica
Pipetas graduadas, volumétricas, buretas, probetas, vaso de precipitado, matraz elen meyer, pipetas pasteur, pipetas de Salí, pipeta de tomas.
1.-Dentro del procedimiento se va a llevar acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería así como las sustancias, solventes y otros tipos de reactivos que se soliciten.
2.-Los pesos y medidas deben ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza grataría donde se debe pesar los materiales identificados en forma individual registrando los pesos de cada uno.
3.-Una vez teniendo los pesos de los materiales se les aplicara un reactivo ya sea sólido, en polvo o líquido y se registrara el peso con el reactivo y así poder llegar a ocupar nuestro sistema métrico decimal y el sistema anglosajón.
4.-El alumno tendrá que comparar el peso del agua corriente (de la llave) y para ello ocupara pipetas graduadas.
5.-Introduzca la punta de la pipeta hasta que el líquido hacienda en el interior de la pipeta hacia arriba la marca superior. La succión la pueden hacer con la boca si es agua y con perillas de hule si son líquidos corrosivos.
6.-En las pipetas de Salí y de tomas se requiere utilizar una manguera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es microlitos.
7.-Controla las descargas de las pipetas graduadas o volumétricas con el dedo índice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco que se forma.
8.-Realice 5 determinaciones de pipetas de diferentes capacidades y para comparar el resultado vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el liquido que contiene la pipeta.
9.-Lave la pipeta o las pipetas y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en el porta pipetas o gradillas para que se estile y seque.
10.-Antes de ocupar sus materiales de cristalería cualquiera que sea se deben de revisar cuidadosamente y verificar que no estén bretados o rotos.
Glosario de Términos:
Peso: Fuerza resultante de la acción de la gravedad sobre un peso, cuerpo.
Medida: Acción y efecto de medir.
Solventes: Sustancias.
Reactivos: Activar de nuevo, dar mas actividad, reactivación.
Agua Corriente: Agua de la llave.
Volumen: Espacio ocupado por un cuerpo.
Menisco: Superficie libre del líquido contenido en in tubo estrecho.
Fichas Bibliograficas:
• Laboratorio de análisis clínicos CBtis no.155.
• Practica de pesos y medidas.
Conclusión:
Esta práctica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pesar, materiales y sustancias, le perdimos el miedo a usar los materiales de vidrio y tuvimos el cuidado necesario con los materiales.
Cada uno de los integrantes tuvo que pasar a medir y pesar cada uno de los instrumentos para tener confianza y perderle el miedo por completo.
Deacuerdo a la explicación del profesor llevamos acabo la actividad con éxito, creo yo, aprendimos a utilizar la balanza granataria para cuando nos apliquen un examen. Mis compañeros y yo realizamos la práctica dinámicamente.
En conclusión esta actividad nos será de mucha utilidad para llevar acabo nuestras prácticas para así saber el peso de cada material y también como utilizar la balanza granataria lo cual es indispensable para hacer un mejor trabajo. Con la finalidad de formar unos alumnos de laboratorio clínico preparados y responsables.
industrial y de servicios no. 155
Mesa 3
Med. Víctor Manuel Alfaro López
Operar equipo y materiales de laboratorio
Practica
Pesos y medidas
31-marzo-2009
Hoja de datos personales:
2LM
Med. Víctor Manuel Alfaro López
Operar Equipo y Material de Laboratorio
• Borjas young Miriam Alejandra.
• Cárdenas Osuna Eric Alonso.
• Godinez Ayala Liliana.
• Herrera Hernández Ana Karen.
• Hidalgo Reyes Yahaira Anette.
• Huitron Barajas José Alberto.
• Jáuregui Flores Erick Fernando.
• Olmos Sahagun Genaro.
• Parra Hernández Ilan Alonso.
Objetivo:
“Laboratorio de Análisis Clínicos”
Practica: Uso y Manejo de la Balanza Granataria.
El alumno técnico en laboratorio clínico deberá aprender a usar la balanza granataria para saber los pesos, volúmenes y medidas exactas de las sustancias y algunos materiales de laboratorio, aplicando los conocimientos que se le han brindado y sus propios conocimientos para poder utilizar este material en cualquier área del laboratorio clínico. Teniendo como finalidad capacitarnos en lo más básico.
Para que todo esto sea posible el alumno debe llagar puntualmente y con su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes, cubre boca).
Para evitar la contaminación de las sustancias o líquidos que se manejan. Los integrantes de la mesa tendrán que manejar y revisar cuidadosamente cada instrumento para evitar caídas y revisar que no estén dañados para que al momento de utilizarlos no ocurra ningún accidente.
Justificación:
Este tema nos ayuda para saber usar la balanza granataria y poderla usar en las practicas que realizaremos de hoy en adelante practicas como: medio de cultivo, determinar el volumen o peso de alguna sustancia, liquida o en polvo.
El objetivo de esta práctica fue aprender a pesar y medir los materiales utilizados en el laboratorio clínico y a desarrollar las habilidades del alumno, lo cual aprenderán.
Utilizar la balanza granataria, saber el peso exacto de cada material es otro aspecto fundamental ya desarrollado.
Con esta práctica aprendimos a manejar la balanza granataria adecuadamente ya que es una herramienta muy utilizada. Además al mismo tiempo pudimos manejar instrumentos de cristalería y es muy útil para poder manejarlos y conocerlos mejor.
Introducción:
Los alumnos de laboratorio clínico, deben utilizar lo balanza granataria de forma adecuada utilizando los conocimientos anteriormente conocidos, para que puedan obtener mejor funcionamiento y manejo de la misma ya que podrán pesar con exactitud cualquier sustancia o material que desee o necesite.
Para ello cada integrante tendrá que aprender individualmente con la ayuda del maestro y compañeros de mesa a mover este instrumento para que a la hora de un examen tenga el conocimiento adecuado de este instrumento.
Dentro del procedimiento se llevara acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería así como las sustancias, solventes y otro tipo de reactivos que se soliciten, todo esto con la finalidad de que el alumno experimente y se familiarice con los materiales y el procedimiento de esta practica.
Indice:
Portada.
Contra portada.
Hoja de datos personales.
Objetivo.
Justificación.
Objetivo particular.
Introducción.
Marco teórico.
Desarrollo.
Fichas bibliografías.
Conclusión.
Marco Teórico:
El día martes 30 de marzo del 2009 en la clase del profesor Víctor realizamos nuestra práctica de pesos y medidas con nuestro equipo de bioseguridad puesto; En esta práctica medimos algunos materiales de los cuales obtuvimos los siguientes resultados.
Material:
Caja de petri: 87.9 gr.
Medio de cultivo: 450 gr.
Vidrio de reloj: 25 gr.
Probeta graduada 100 ml: 98.4 gr.
Pipeta de Salí: 4.8 gr.
Pipeta de 5 ml: 22.9 gr.
Vidrio escavado: 31.1 gr.
Vaso de precipitado de 500 ml: 117.2 gr.
Vaso de precipitado de 50 ml: 27.6 gr.
Pipeta pasteur: 3.7 gr.
Espátula: 51.6 gr.
Tubo de ensaye: 9 gr.
Manguerilla con boquilla: 3.5 gr.
Cristalizador: 47.9 gr.
Cristalizador con sal: 79.1 gr.
Sal: 31.1 gr.
Pipeta de 100 ml: 3.3 gr.
Vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr.
Vidrio de reloj con 1 ml de agua: 25.2 gr.
Desarrollo:
Unidad II
Pesos y Medidas
El alumno debe llagar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos químicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubre boca).
Instrucciones al desarrollar dentro del laboratorio clínico:
Materiales que se ocuparan en esta práctica
Pipetas graduadas, volumétricas, buretas, probetas, vaso de precipitado, matraz elen meyer, pipetas pasteur, pipetas de Salí, pipeta de tomas.
1.-Dentro del procedimiento se va a llevar acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería así como las sustancias, solventes y otros tipos de reactivos que se soliciten.
2.-Los pesos y medidas deben ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza grataría donde se debe pesar los materiales identificados en forma individual registrando los pesos de cada uno.
3.-Una vez teniendo los pesos de los materiales se les aplicara un reactivo ya sea sólido, en polvo o líquido y se registrara el peso con el reactivo y así poder llegar a ocupar nuestro sistema métrico decimal y el sistema anglosajón.
4.-El alumno tendrá que comparar el peso del agua corriente (de la llave) y para ello ocupara pipetas graduadas.
5.-Introduzca la punta de la pipeta hasta que el líquido hacienda en el interior de la pipeta hacia arriba la marca superior. La succión la pueden hacer con la boca si es agua y con perillas de hule si son líquidos corrosivos.
6.-En las pipetas de Salí y de tomas se requiere utilizar una manguera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es microlitos.
7.-Controla las descargas de las pipetas graduadas o volumétricas con el dedo índice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco que se forma.
8.-Realice 5 determinaciones de pipetas de diferentes capacidades y para comparar el resultado vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el liquido que contiene la pipeta.
9.-Lave la pipeta o las pipetas y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en el porta pipetas o gradillas para que se estile y seque.
10.-Antes de ocupar sus materiales de cristalería cualquiera que sea se deben de revisar cuidadosamente y verificar que no estén bretados o rotos.
Glosario de Términos:
Peso: Fuerza resultante de la acción de la gravedad sobre un peso, cuerpo.
Medida: Acción y efecto de medir.
Solventes: Sustancias.
Reactivos: Activar de nuevo, dar mas actividad, reactivación.
Agua Corriente: Agua de la llave.
Volumen: Espacio ocupado por un cuerpo.
Menisco: Superficie libre del líquido contenido en in tubo estrecho.
Fichas Bibliograficas:
• Laboratorio de análisis clínicos CBtis no.155.
• Practica de pesos y medidas.
Conclusión:
Esta práctica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pesar, materiales y sustancias, le perdimos el miedo a usar los materiales de vidrio y tuvimos el cuidado necesario con los materiales.
Cada uno de los integrantes tuvo que pasar a medir y pesar cada uno de los instrumentos para tener confianza y perderle el miedo por completo.
Deacuerdo a la explicación del profesor llevamos acabo la actividad con éxito, creo yo, aprendimos a utilizar la balanza granataria para cuando nos apliquen un examen. Mis compañeros y yo realizamos la práctica dinámicamente.
En conclusión esta actividad nos será de mucha utilidad para llevar acabo nuestras prácticas para así saber el peso de cada material y también como utilizar la balanza granataria lo cual es indispensable para hacer un mejor trabajo. Con la finalidad de formar unos alumnos de laboratorio clínico preparados y responsables.
Clasificación de las moléculas inorgánicas que funcionan en el cuerpo humano.
Las biomoleculas constituyentes de los seres vivos formados por solo cuatro elementos que son: Hidrogeno, Oxigeno, Carbono y Nitrógeno. Representando el 99% de los átomos de los seres vivos.
INORGANICAS: El agua la biomolecula mas abundante, gases (Oxigeno, Dióxido de carbono), sales inorgánicas, aniones como el fosfato (HPO4), Bicarbonato (HCO4) y cationes como el Amonio (NH4).
MOLECULA DEL AGUA. Molécula conformada por Hidrogeno y Oxigeno, lo cual la hace una molécula inorgánica.
MOLECULAS INORGANICAS EN EL ORGANISMO HUMANO
El agua como principal constituyente más abundante en el cuerpo, se tiene que beber y no durar de 5 a 6 días sin consumirla.
Sodio: Sirve para mantener un balance de los sistemas de fluidos físicos.
El ácido nítrico: puro es un líquido viscoso, incoloro e inodoro. El ácido nítrico concentrado tiñe la piel humana de amarillo al contacto, debido a una reacción con la Cisterna presente en la queratina de la piel. (HNO3).
Peroxido de hidrogeno (agua oxigenada)respiración, cianosis, expectoración, tos) Su mecanismo de acción se debe a la efervescencia que produce, ya que la liberación de oxígeno destruye los microorganismos anaerobios estrictos, y el burbujeo de la solución cuando entra en contacto con los tejidos y ciertas sustancias químicas, expulsa restos titulares fuera del conducto.
INORGANICAS: El agua la biomolecula mas abundante, gases (Oxigeno, Dióxido de carbono), sales inorgánicas, aniones como el fosfato (HPO4), Bicarbonato (HCO4) y cationes como el Amonio (NH4).
MOLECULA DEL AGUA. Molécula conformada por Hidrogeno y Oxigeno, lo cual la hace una molécula inorgánica.
MOLECULAS INORGANICAS EN EL ORGANISMO HUMANO
El agua como principal constituyente más abundante en el cuerpo, se tiene que beber y no durar de 5 a 6 días sin consumirla.
Sodio: Sirve para mantener un balance de los sistemas de fluidos físicos.
El ácido nítrico: puro es un líquido viscoso, incoloro e inodoro. El ácido nítrico concentrado tiñe la piel humana de amarillo al contacto, debido a una reacción con la Cisterna presente en la queratina de la piel. (HNO3).
Peroxido de hidrogeno (agua oxigenada)respiración, cianosis, expectoración, tos) Su mecanismo de acción se debe a la efervescencia que produce, ya que la liberación de oxígeno destruye los microorganismos anaerobios estrictos, y el burbujeo de la solución cuando entra en contacto con los tejidos y ciertas sustancias químicas, expulsa restos titulares fuera del conducto.
lunes, 4 de mayo de 2009
practica 3 pipeteo
Centro de Bachillerato Tecnológico
industrial y de servicios no. 155
Hidalgo Reyes Yahaira Anette
2lm
Med. Víctor Manuel Alfaro López
“Operar Equipo y Material de Laboratorio”
Practica 3
“Pipeteo”
23-abril-2009
Objetivo: El alumno técnico en laboratorio clínico deberá aprender a usar las pipetas adecuadamente y pipetear exactamente para poder realizar prácticas con algunas sustancias. Teniendo como finalidad capacitarlos en lo básico.
Introducción: Los alumnos de laboratorio clínico, deben utilizar las pipetas de forma adecuada utilizando los conocimientos anteriormente conocidos, para poder obtener los resultados exactos.
Indice:
-portada.
-introducción.
-objetivo.
-índice.
-desarrollo.
-bitácora.
-conclusión.
Desarrollo: El alumno debe llagar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos químicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes, y cubre boca).
Pipeteo
-manejo de pipetas
Con la utilización de equipo de cristalería en el termino de pipetas graduadas para realizar la actividad de medición de líquidos (volumen) de un mililitro hasta cinco.
En la cubeta para rotor de equipo científico llamado monarca se hace un balanceo en cifra de microlitos (20) se utiliza la pipeta automática en forma manual aplicamos la graduación con la misma pipeta graduada se toma una muestra de liquido y se deposita en el vidrio de reloj y se compara contra la cubeta de rotor.
• Se comparan las medidas de todas las pipetas y todos los integrantes de la mesa deben realizar la actividad de pipeteo.
• Lamina de cristal para pruebas inmunológicas (serologicas): su característica es escavada y algunas otras solo tienen un circulo plástico para contener el liquido que se deposita en el.
La pipeta pasteur la ocupamos con su glóbulo de extracción se utiliza para el punteo, para la lamina de cristal.
Bitácora:
Mesa 3
Practica 3 “pipeteo”
Materiales:
4 pipetas volumétricas.
1. 10 y litros.
2. 10 ml.
3. 10 uu ml.
4. 1 pipeta pasteur.
5. matraz Elen Meyer.
6. probeta graduada.
7. pipeta automática.
8. vidrio de reloj.
Se utiliza el matraz con agua para pipetear y pasar el agua a la probeta para medir exactamente sin que “la gravedad gane “, utilizando la pipeta pasteur.
10 ul = 2 gotas de la pipeta pasteur.
5.0 ul = 1 gota de la pipeta automática.
Conclusión: Esta práctica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pipetear sustancias. Cada uno de los integrantes tubo que pipetear el agua de un matraz can la boca y con el lóbulo cuando se trato de la pipeta pasteur para después verificar en la probeta graduada.
industrial y de servicios no. 155
Hidalgo Reyes Yahaira Anette
2lm
Med. Víctor Manuel Alfaro López
“Operar Equipo y Material de Laboratorio”
Practica 3
“Pipeteo”
23-abril-2009
Objetivo: El alumno técnico en laboratorio clínico deberá aprender a usar las pipetas adecuadamente y pipetear exactamente para poder realizar prácticas con algunas sustancias. Teniendo como finalidad capacitarlos en lo básico.
Introducción: Los alumnos de laboratorio clínico, deben utilizar las pipetas de forma adecuada utilizando los conocimientos anteriormente conocidos, para poder obtener los resultados exactos.
Indice:
-portada.
-introducción.
-objetivo.
-índice.
-desarrollo.
-bitácora.
-conclusión.
Desarrollo: El alumno debe llagar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos químicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes, y cubre boca).
Pipeteo
-manejo de pipetas
Con la utilización de equipo de cristalería en el termino de pipetas graduadas para realizar la actividad de medición de líquidos (volumen) de un mililitro hasta cinco.
En la cubeta para rotor de equipo científico llamado monarca se hace un balanceo en cifra de microlitos (20) se utiliza la pipeta automática en forma manual aplicamos la graduación con la misma pipeta graduada se toma una muestra de liquido y se deposita en el vidrio de reloj y se compara contra la cubeta de rotor.
• Se comparan las medidas de todas las pipetas y todos los integrantes de la mesa deben realizar la actividad de pipeteo.
• Lamina de cristal para pruebas inmunológicas (serologicas): su característica es escavada y algunas otras solo tienen un circulo plástico para contener el liquido que se deposita en el.
La pipeta pasteur la ocupamos con su glóbulo de extracción se utiliza para el punteo, para la lamina de cristal.
Bitácora:
Mesa 3
Practica 3 “pipeteo”
Materiales:
4 pipetas volumétricas.
1. 10 y litros.
2. 10 ml.
3. 10 uu ml.
4. 1 pipeta pasteur.
5. matraz Elen Meyer.
6. probeta graduada.
7. pipeta automática.
8. vidrio de reloj.
Se utiliza el matraz con agua para pipetear y pasar el agua a la probeta para medir exactamente sin que “la gravedad gane “, utilizando la pipeta pasteur.
10 ul = 2 gotas de la pipeta pasteur.
5.0 ul = 1 gota de la pipeta automática.
Conclusión: Esta práctica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pipetear sustancias. Cada uno de los integrantes tubo que pipetear el agua de un matraz can la boca y con el lóbulo cuando se trato de la pipeta pasteur para después verificar en la probeta graduada.
practica 3
Mesa 3
Practica 3: ¨Pipeteo¨
Materiales:
4 pipetas volumétricas.
1. 10 y litros.
2. 10 ml.
3. 10 uu ml.
4. 1 pipeta pasteur.
5. matraz Elen Meyer.
6. probeta graduada.
7. pipeta automática.
8. vidrio de reloj.
Se utiliza el matraz con agua para pipetear y pasar el agua a la probeta para medir exactamente sin que “la gravedad gane “, utilizando la pipeta pasteur.
10 ul = 2 gotas de la pipeta pasteur.
5.0 ul = 1 gota de la pipeta automática.
Practica 3: ¨Pipeteo¨
Materiales:
4 pipetas volumétricas.
1. 10 y litros.
2. 10 ml.
3. 10 uu ml.
4. 1 pipeta pasteur.
5. matraz Elen Meyer.
6. probeta graduada.
7. pipeta automática.
8. vidrio de reloj.
Se utiliza el matraz con agua para pipetear y pasar el agua a la probeta para medir exactamente sin que “la gravedad gane “, utilizando la pipeta pasteur.
10 ul = 2 gotas de la pipeta pasteur.
5.0 ul = 1 gota de la pipeta automática.
sábado, 2 de mayo de 2009
vernier
VERNIER
CALIBRADOR PIE DE REY 0 VERNIER
Calibrador vernier es uno de los instrumentos mecánicos para medición lineal de exteriores, medición de interiores y de profundidades más ampliamente utilizados. Se creé que la escala vernier fue inventado por un portugués llamado Petrus Nonius. El calibrador vernier actual fue desarrollado después, en 1631 por Pierre Vernier.
El vernier o nonio que poseen los calibradores actuales permiten realizar fáciles lecturas hasta 0.05 o 0.02 mm y de 0.001″ o 1/128″ dependiendo del sistema de graduación a utilizar (métrico o inglés).
CALIBRADOR PIE DE REY 0 VERNIER
Calibrador vernier es uno de los instrumentos mecánicos para medición lineal de exteriores, medición de interiores y de profundidades más ampliamente utilizados. Se creé que la escala vernier fue inventado por un portugués llamado Petrus Nonius. El calibrador vernier actual fue desarrollado después, en 1631 por Pierre Vernier.
El vernier o nonio que poseen los calibradores actuales permiten realizar fáciles lecturas hasta 0.05 o 0.02 mm y de 0.001″ o 1/128″ dependiendo del sistema de graduación a utilizar (métrico o inglés).
practica pesos y medidas
Centro de Bachillerato Tecnológico
industrial y de servicios no. 155
Hidalgo Reyes Yahaira Anette
2lm
Med. Víctor Manuel Alfaro López
Operar equipo y materiales de laboratorio
Practica
Pesos y medidas
31-marzo-2009
Objetivo: El alumno técnico en laboratorio clínico deberá aprender a usar la balanza granataria para saber los pesos, volúmenes y medidas exactas de las sustancias y algunos materiales de laboratorio. Teniendo como finalidad capacitarnos en lo más básico.
Introducción: Los alumnos de laboratorio clínico, deben utilizar lo balanza granataria de forma adecuada utilizando los conocimientos anteriormente conocidos, para poder obtener los resultados exactos.
Indice:
Portada.
Objetivo.
Introducción.
Indice.
Desarrollo.
Bitácora.
Conclusión.
Desarrollo: El alumno debe llagar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos químicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubre boca).
Instrucciones al desarrollar dentro del laboratorio clínico:
Materiales que se ocuparan en esta práctica
Pipetas graduadas, volumétricas, buretas, probetas, vaso de precipitado, matraz elen meyer, pipetas pasteur, pipetas de Salí, pipeta de tomas.
1.-Dentro del procedimiento se va a llevar acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería así como las sustancias, solventes y otros tipos de reactivos que se soliciten.
2.-Los pesos y medidas deben ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza grataría donde se debe pesar los materiales identificados en forma individual registrando los pesos de cada uno.
3.-Una vez teniendo los pesos de los materiales se les aplicara un reactivo ya sea sólido, en polvo o líquido y se registrara el peso con el reactivo y así poder llegar a ocupar nuestro sistema métrico decimal y el sistema anglosajón.
4.-El alumno tendrá que comparar el peso del agua corriente (de la llave) y para ello ocupara pipetas graduadas.
5.-Introduzca la punta de la pipeta hasta que el líquido hacienda en el interior de la pipeta hacia arriba la marca superior. La succión la pueden hacer con la boca si es agua y con perillas de hule si son líquidos corrosivos.
6.-En las pipetas de Salí y de tomas se requiere utilizar una manguera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es microlitos.
7.-Controla las descargas de las pipetas graduadas o volumétricas con el dedo índice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco que se forma.
8.-Realice 5 determinaciones de pipetas de diferentes capacidades y para comparar el resultado vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el liquido que contiene la pipeta.
9.-Lave la pipeta o las pipetas y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en el porta pipetas o gradillas para que se estile y seque.
10.-Antes de ocupar sus materiales de cristalería cualquiera que sea se deben de revisar cuidadosamente y verificar que no estén bretados o rotos.
Bitácora:
Caja de petri: 87.9 gr.
Medio de cultivo: 450 gr.
Vidrio de reloj: 25 gr.
Probeta graduada 100 ml: 98.4 gr.
Pipeta de Salí: 4.8 gr.
Pipeta de 5 ml: 22.9 gr.
Vidrio escavado: 31.1 gr.
Vaso de precipitado de 500 ml: 117.2 gr.
Vaso de precipitado de 50 ml: 27.6 gr.
Pipeta pasteur: 3.7 gr.
Espátula: 51.6 gr.
Tubo de ensaye: 9 gr.
Manguerilla con boquilla: 3.5 gr.
Cristalizador: 47.9 gr.
Cristalizador con sal: 79.1 gr.
Sal: 31.1 gr.
Pipeta de 100 ml: 3.3 gr.
Vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr.
Vidrio de reloj con 1 ml de agua: 25.2 gr.
Conclusión: Esta práctica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pesar, materiales y sustancias, le perdimos el miedo a usar los materiales de vidrio y tuvimos el cuidado necesario con los materiales.
Cada uno de los integrantes tuvo que pasar a medir y pesar cada uno de los instrumentos para tener confianza y perderle el miedo por completo.
En pocas palabras yo diría que esta práctica nos fue de mucha utilidad.
industrial y de servicios no. 155
Hidalgo Reyes Yahaira Anette
2lm
Med. Víctor Manuel Alfaro López
Operar equipo y materiales de laboratorio
Practica
Pesos y medidas
31-marzo-2009
Objetivo: El alumno técnico en laboratorio clínico deberá aprender a usar la balanza granataria para saber los pesos, volúmenes y medidas exactas de las sustancias y algunos materiales de laboratorio. Teniendo como finalidad capacitarnos en lo más básico.
Introducción: Los alumnos de laboratorio clínico, deben utilizar lo balanza granataria de forma adecuada utilizando los conocimientos anteriormente conocidos, para poder obtener los resultados exactos.
Indice:
Portada.
Objetivo.
Introducción.
Indice.
Desarrollo.
Bitácora.
Conclusión.
Desarrollo: El alumno debe llagar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos químicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubre boca).
Instrucciones al desarrollar dentro del laboratorio clínico:
Materiales que se ocuparan en esta práctica
Pipetas graduadas, volumétricas, buretas, probetas, vaso de precipitado, matraz elen meyer, pipetas pasteur, pipetas de Salí, pipeta de tomas.
1.-Dentro del procedimiento se va a llevar acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería así como las sustancias, solventes y otros tipos de reactivos que se soliciten.
2.-Los pesos y medidas deben ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza grataría donde se debe pesar los materiales identificados en forma individual registrando los pesos de cada uno.
3.-Una vez teniendo los pesos de los materiales se les aplicara un reactivo ya sea sólido, en polvo o líquido y se registrara el peso con el reactivo y así poder llegar a ocupar nuestro sistema métrico decimal y el sistema anglosajón.
4.-El alumno tendrá que comparar el peso del agua corriente (de la llave) y para ello ocupara pipetas graduadas.
5.-Introduzca la punta de la pipeta hasta que el líquido hacienda en el interior de la pipeta hacia arriba la marca superior. La succión la pueden hacer con la boca si es agua y con perillas de hule si son líquidos corrosivos.
6.-En las pipetas de Salí y de tomas se requiere utilizar una manguera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es microlitos.
7.-Controla las descargas de las pipetas graduadas o volumétricas con el dedo índice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco que se forma.
8.-Realice 5 determinaciones de pipetas de diferentes capacidades y para comparar el resultado vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el liquido que contiene la pipeta.
9.-Lave la pipeta o las pipetas y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en el porta pipetas o gradillas para que se estile y seque.
10.-Antes de ocupar sus materiales de cristalería cualquiera que sea se deben de revisar cuidadosamente y verificar que no estén bretados o rotos.
Bitácora:
Caja de petri: 87.9 gr.
Medio de cultivo: 450 gr.
Vidrio de reloj: 25 gr.
Probeta graduada 100 ml: 98.4 gr.
Pipeta de Salí: 4.8 gr.
Pipeta de 5 ml: 22.9 gr.
Vidrio escavado: 31.1 gr.
Vaso de precipitado de 500 ml: 117.2 gr.
Vaso de precipitado de 50 ml: 27.6 gr.
Pipeta pasteur: 3.7 gr.
Espátula: 51.6 gr.
Tubo de ensaye: 9 gr.
Manguerilla con boquilla: 3.5 gr.
Cristalizador: 47.9 gr.
Cristalizador con sal: 79.1 gr.
Sal: 31.1 gr.
Pipeta de 100 ml: 3.3 gr.
Vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr.
Vidrio de reloj con 1 ml de agua: 25.2 gr.
Conclusión: Esta práctica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pesar, materiales y sustancias, le perdimos el miedo a usar los materiales de vidrio y tuvimos el cuidado necesario con los materiales.
Cada uno de los integrantes tuvo que pasar a medir y pesar cada uno de los instrumentos para tener confianza y perderle el miedo por completo.
En pocas palabras yo diría que esta práctica nos fue de mucha utilidad.
Tipo de bacteria que crece en los medios de cultivo habilitados
Los gases principales que afectan al desarrollo microbiano son el oxigeno y dióxido de carbono. Las bacterias presentan una respuesta amplia y variable al oxigeno libre clasificándose en cuatro grupos:
• Aerobias: Bacterias que se desarrollan en presencia de oxigeno (O) libre.
• Anaerobias: Bacterias que se desarrollan en ausencia de oxigeno (O) libre.
• Aerobias facultabas: Bacterias que se desarrollan tanto en presencia como en ausencia de oxigeno (O) libre.
• Microaefilas: Bacterias que crecen en presencia de pequeñas cantidades de oxigeno (O) libre.
• Aerobias: Bacterias que se desarrollan en presencia de oxigeno (O) libre.
• Anaerobias: Bacterias que se desarrollan en ausencia de oxigeno (O) libre.
• Aerobias facultabas: Bacterias que se desarrollan tanto en presencia como en ausencia de oxigeno (O) libre.
• Microaefilas: Bacterias que crecen en presencia de pequeñas cantidades de oxigeno (O) libre.
salmonella, proteus y brusella
Salmonella, proteus y brusella
La salmonella: genero de bacterias patógenas. Las salmonellas son bacterias gram negativas, no espoluradas y móviles, que pertenecen a la familia entero-bacteriáceas.
Existen tres tipos de especies: salmonella typhi, s.choleraesuis y s. enteriditis. Esta última presenta más de 1.400 variedades antigénicas distintas.
Clasificación científica: el genero salmonella pertenece a la familia enterobacteriaceae.
Tipo Especie Enfermedad
Bacilo Salmonella sp. Gastroenteritis
Bacilo Salmonella typhi Disentería bacilar
Bacilo Salmonella typhimurium Sigelosis
Proteus: los cálculos de estruvita se forman por las infecciones urinarias, sobre todo por el bacito proteus. Hay tres especies que causan infecciones oportunistas en el hombre: p. vulgaris, p. marabilis y p. penneri.
Clasificación científica: las enterobacterias constituyen la familia Enterobacteriáceas (Enterobacteriaceae). La salmonelosis es producida por las especies Salmonella choleraesuis y Salmonella enteriditis; la peste, por Yersinia pestis. Otros géneros de esta familia son Shigella, Escherichia, Proteus y Enterobacter.
Brusella: brusella abortus es una bacteria que causa abortos e infertilidad. Se multiplica en el citoplasma celular invadiendo los mecanismos de muerte intracelular.
La salmonella: genero de bacterias patógenas. Las salmonellas son bacterias gram negativas, no espoluradas y móviles, que pertenecen a la familia entero-bacteriáceas.
Existen tres tipos de especies: salmonella typhi, s.choleraesuis y s. enteriditis. Esta última presenta más de 1.400 variedades antigénicas distintas.
Clasificación científica: el genero salmonella pertenece a la familia enterobacteriaceae.
Tipo Especie Enfermedad
Bacilo Salmonella sp. Gastroenteritis
Bacilo Salmonella typhi Disentería bacilar
Bacilo Salmonella typhimurium Sigelosis
Proteus: los cálculos de estruvita se forman por las infecciones urinarias, sobre todo por el bacito proteus. Hay tres especies que causan infecciones oportunistas en el hombre: p. vulgaris, p. marabilis y p. penneri.
Clasificación científica: las enterobacterias constituyen la familia Enterobacteriáceas (Enterobacteriaceae). La salmonelosis es producida por las especies Salmonella choleraesuis y Salmonella enteriditis; la peste, por Yersinia pestis. Otros géneros de esta familia son Shigella, Escherichia, Proteus y Enterobacter.
Brusella: brusella abortus es una bacteria que causa abortos e infertilidad. Se multiplica en el citoplasma celular invadiendo los mecanismos de muerte intracelular.
pruebas serologicas
Pruebas serologicas
Prueba serologica: Existen barios tipos de pruebas serologicas como, serologica salmonella typhi, serologia del toxoplasma, serologia del virus de herpes, serologia del virus de la rubéola.
Reacciones Febriles: Son un grupo de pruebas de aglutinación que investigan la presencia en el suero del paciente, de anticuerpos contra cepas bacterianas patógenos que causan la fiebre de tifoidea, paratifoidea y brucelosis.
VDRL: Es un examen de tamizaje para sífilis que mide los anticuerpos llamados reaginas, que pueden ser producidos por el treponema pallidum, la bacteria causante de dicha enfermedad.
Prueba de Embarazo: Los métodos procoses son los que permiten detectar el embarazo en sus primeros días y antes de su principal síntoma, la suspensión de la menstruación o amenorrea.
Brusella: Es un genero de bacterias Gram negativas. Son cocobasilos pequeños, no-móviles y encapsulados.
Salmonella: Es un genero de bacteria que pertenece a la familia enterobacteriaceoe, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultivos, con flagelos peritricos y que no desarrollan capsula ni esporas.
Prueba serologica: Existen barios tipos de pruebas serologicas como, serologica salmonella typhi, serologia del toxoplasma, serologia del virus de herpes, serologia del virus de la rubéola.
Reacciones Febriles: Son un grupo de pruebas de aglutinación que investigan la presencia en el suero del paciente, de anticuerpos contra cepas bacterianas patógenos que causan la fiebre de tifoidea, paratifoidea y brucelosis.
VDRL: Es un examen de tamizaje para sífilis que mide los anticuerpos llamados reaginas, que pueden ser producidos por el treponema pallidum, la bacteria causante de dicha enfermedad.
Prueba de Embarazo: Los métodos procoses son los que permiten detectar el embarazo en sus primeros días y antes de su principal síntoma, la suspensión de la menstruación o amenorrea.
Brusella: Es un genero de bacterias Gram negativas. Son cocobasilos pequeños, no-móviles y encapsulados.
Salmonella: Es un genero de bacteria que pertenece a la familia enterobacteriaceoe, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultivos, con flagelos peritricos y que no desarrollan capsula ni esporas.
pruebas serologicas
Practicas
1 microscopio.
2 pesos y medidas.
3 pipeteo.
4 enfoque de microorganismos.
Lamina de cristal para inmunologia.
Placa evacuada.
Bacilos HOAB proteus
(Gram) brusella oxig.
Entero bacterias
Serologia
Serologia
Febrilin: Reactivo
Prueba de aglutinación
Salmonella:
Hígado dañado.
Tifoidea.
H-A-0x19
Paratifoidea
A-B-0x19
Brucellosis
Diluciones:
Brusella: sangre
Copro
Serologia
V.D.R.L
Sífilis
Prueba de embarazo
Pipeta automática 10-100 ml
1 microscopio.
2 pesos y medidas.
3 pipeteo.
4 enfoque de microorganismos.
Lamina de cristal para inmunologia.
Placa evacuada.
Bacilos HOAB proteus
(Gram) brusella oxig.
Entero bacterias
Serologia
Serologia
Febrilin: Reactivo
Prueba de aglutinación
Salmonella:
Hígado dañado.
Tifoidea.
H-A-0x19
Paratifoidea
A-B-0x19
Brucellosis
Diluciones:
Brusella: sangre
Copro
Serologia
V.D.R.L
Sífilis
Prueba de embarazo
Pipeta automática 10-100 ml
practica 3
seguir estructura dada
Practica 3
Pipeteo
-manejo de pipetas
Con la utilización de equipo de cristalería en el termino de pipetas graduadas para realizar la actividad de medición de líquidos (volumen) de un mililitro hasta cinco.
En la cubeta para rotor de equipo científico llamado monarca se hace un balanceo en cifra de microlitos (20) se utiliza la pipeta automática en forma manual aplicamos la graduación con la misma pipeta graduada se toma una muestra de liquido y se deposita en el vidrio de reloj y se compara contra la cubeta de rotor.
• Se comparan las medidas de todas las pipetas y todos los integrantes de la mesa deben realizar la actividad de pipeteo.
• Lamina de cristal para pruebas inmunológicas (serologicas): su característica es escavada y algunas otras solo tienen un circulo plástico para contener el liquido que se deposita en el.
La pipeta pasteur la ocupamos con su glóbulo de extracción se utiliza para el punteo, para la lamina de cristal.
Practica 3
Pipeteo
-manejo de pipetas
Con la utilización de equipo de cristalería en el termino de pipetas graduadas para realizar la actividad de medición de líquidos (volumen) de un mililitro hasta cinco.
En la cubeta para rotor de equipo científico llamado monarca se hace un balanceo en cifra de microlitos (20) se utiliza la pipeta automática en forma manual aplicamos la graduación con la misma pipeta graduada se toma una muestra de liquido y se deposita en el vidrio de reloj y se compara contra la cubeta de rotor.
• Se comparan las medidas de todas las pipetas y todos los integrantes de la mesa deben realizar la actividad de pipeteo.
• Lamina de cristal para pruebas inmunológicas (serologicas): su característica es escavada y algunas otras solo tienen un circulo plástico para contener el liquido que se deposita en el.
La pipeta pasteur la ocupamos con su glóbulo de extracción se utiliza para el punteo, para la lamina de cristal.
practica 1
Practica
Mesa 3
Caja de petri: 87.9 gr.
Medio de cultivo: 450 gr.
Vidrio de reloj: 25 gr.
Probeta graduada 100 ml: 98.4 gr.
Pipeta de Saly: 4.8 gr.
Pipeta de 5 ml: 22.9 gr.
Vidrio escavado: 31.1 gr.
Vaso de precipitado de 500 ml: 117.2 gr.
Vaso de precipitado de 50 ml: 27.6 gr.
Pipeta pasteur: 3.7 gr.
Espátula: 51.6 gr.
Tubo de ensaye: 9 gr.
Manguerilla con boquilla: 3.5 gr.
Cristalizador: 47.9 gr.
Cristalizador con sal: 79.1 gr.
Sal: 31.1 gr.
Pipeta de 100 ml: 3.3 gr.
Vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr.
Vidrio de reloj con 1 ml de agua: 25.2 gr.
Mesa 3
Caja de petri: 87.9 gr.
Medio de cultivo: 450 gr.
Vidrio de reloj: 25 gr.
Probeta graduada 100 ml: 98.4 gr.
Pipeta de Saly: 4.8 gr.
Pipeta de 5 ml: 22.9 gr.
Vidrio escavado: 31.1 gr.
Vaso de precipitado de 500 ml: 117.2 gr.
Vaso de precipitado de 50 ml: 27.6 gr.
Pipeta pasteur: 3.7 gr.
Espátula: 51.6 gr.
Tubo de ensaye: 9 gr.
Manguerilla con boquilla: 3.5 gr.
Cristalizador: 47.9 gr.
Cristalizador con sal: 79.1 gr.
Sal: 31.1 gr.
Pipeta de 100 ml: 3.3 gr.
Vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr.
Vidrio de reloj con 1 ml de agua: 25.2 gr.
Nombre de las células vegetales de: cebolla, tomate y lechuga.
Célula de la cebolla: Las células de la catafilia de la cebolla tienen las paredes celulares muy distinguibles del resto de la célula y mas a un con azul de metileno, están en posiciones que se notan ordenadas a simple vista y son transparentes.
Célula del tomate: En el citoplasma se percibe una serie de gránulos rojizos-anaranjados que son los cloroplastos, el núcleo puede llegar a observarse por un típico aspecto y tamaño.
Célula de la lechuga: Las estomas poseen cloroplastos estas se encuentran en las estomas en ambas caras del limbo o solo en el envés.
Célula del tomate: En el citoplasma se percibe una serie de gránulos rojizos-anaranjados que son los cloroplastos, el núcleo puede llegar a observarse por un típico aspecto y tamaño.
Célula de la lechuga: Las estomas poseen cloroplastos estas se encuentran en las estomas en ambas caras del limbo o solo en el envés.
camara de neubauer
Es un instrumento utilizado en cultivo celular para realizar conteo de células, en un medio de cultivo líquido.
Consta de dos placas de vidrio.
Una de las placas posee una gradilla de dimensiones conocidas y que es visible al microscopio.
Consta de dos placas de vidrio.
Una de las placas posee una gradilla de dimensiones conocidas y que es visible al microscopio.
¿Cuanta cantidad de moléculas inorgánicas existen en el organismo humano?
Cloro (Cl): Es necesario para la regulación del balance hídrico provocando acido carhidrico del tejido gástrico.
Sodio (Na): Interviene en la regulación del balance hídrico provocando la retención de agua en el organismo.
Agua (H2O): Actúa en el balance hídrico favorecido de eliminación del organismo.
Yodo (I): Es necesario para que la glándula tiroides elabore la secreción hormonal que regule el metabolismo de los glusidos.
Hierro (Fe): Es imprecendible para la formación de la hemoglobina de los glóbulos rojos.
Calcio (Ca) y Fósforo (P):Son los que constituyen la parte inorganica de los huesos.
Sodio (Na): Interviene en la regulación del balance hídrico provocando la retención de agua en el organismo.
Agua (H2O): Actúa en el balance hídrico favorecido de eliminación del organismo.
Yodo (I): Es necesario para que la glándula tiroides elabore la secreción hormonal que regule el metabolismo de los glusidos.
Hierro (Fe): Es imprecendible para la formación de la hemoglobina de los glóbulos rojos.
Calcio (Ca) y Fósforo (P):Son los que constituyen la parte inorganica de los huesos.
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